ATCC細(xì)胞株在培養(yǎng)瓶長成致密單層后,已基本上飽和,為使細(xì)胞能繼續(xù)生長,同時(shí)也將細(xì)胞數(shù)量擴(kuò)大,就必須進(jìn)行傳代(再培養(yǎng))。傳代培養(yǎng)也是一種將細(xì)胞種保存下去的方法。同時(shí)也是利用培養(yǎng)細(xì)胞進(jìn)行各種實(shí)驗(yàn)的必經(jīng)過程。懸浮型細(xì)胞直接分瓶就可以,而貼壁細(xì)胞需經(jīng)消化后才能分瓶。ATCC細(xì)胞株一般使用蛋白水解酶(比如胰蛋白酶)消化貼壁細(xì)胞成單個(gè)細(xì)胞,也可加入乙二胺四乙酸(EDTA)提高消化能力,EDTA 是一種二價(jià)離子的螯合劑,能抑制細(xì)胞膜上的Ca2+和Mg2+。常用的細(xì)胞消化液一般含有0.25%(w/v)的胰酶和0.03% (w/v) EDTA,一般用不含Ca2+和Mg2+的鹽溶液配置,先用胰酶-EDTA 消化液清洗細(xì)胞(5.0 -10.0 ml/75cm),然后棄去消化液,重新加入少量的胰酶-EDTA 消化液(2.0 to 5.0 ml/75 sq. cm flask) ,觀察ATCC細(xì)胞株直到細(xì)胞變圓脫離瓶壁,此過程一般需要5-15分鐘,為了避免細(xì)胞成團(tuán),消化細(xì)胞的過程中不要拍打細(xì)胞瓶。對(duì)于特別難消化的細(xì)胞,可以加入胰酶EDTA 消化液后把細(xì)胞置于37°C 促進(jìn)消化,ATCC細(xì)胞株脫離瓶壁后,立刻加入含有血清的*培養(yǎng)基中止消化,血清中某些蛋白質(zhì)能夠抑制胰酶的活性。一般情況下,離心并不需要。如果細(xì)胞需要無血清或者低血清的培養(yǎng)基,可以以125000g 轉(zhuǎn)速離心5分鐘,然后棄去中止用的培養(yǎng)基,加入適合的新的培養(yǎng)基輕輕混勻細(xì)胞,移入到新的培養(yǎng)瓶。傳代的比例視細(xì)胞類型而定,
ATCC細(xì)胞株一般是1:2-1:20,具體比例可參考說明書。胰蛋白酶會(huì)對(duì)某些細(xì)胞的細(xì)胞膜產(chǎn)生損傷,對(duì)于這種類型的細(xì)胞,可用細(xì)胞刮輕輕刮下細(xì)胞,加入適量的培養(yǎng)基,輕輕吹打混勻細(xì)胞,然后進(jìn)行傳代培養(yǎng)。
ATCC細(xì)胞株的污染鑒定、預(yù)防和處理問題。
普通微生物污染:培養(yǎng)基渾濁,高倍鏡觀察有微生物污染;按規(guī)定棄用并全面嚴(yán)格滅菌。
支原體污染:顯微鏡無法觀察,依經(jīng)驗(yàn)表現(xiàn)為細(xì)胞生長緩慢,有細(xì)胞漂浮等等,應(yīng)通過PCR 等方法鑒定,如發(fā)現(xiàn)支原體污染,ATCC細(xì)胞株應(yīng)按規(guī)定棄用,實(shí)驗(yàn)室要及時(shí)全面消毒滅菌,防止蔓延。(有些常規(guī)性細(xì)胞學(xué)實(shí)驗(yàn)不受支原體污染影響,可以繼續(xù)使用細(xì)胞傳代,為防污染擴(kuò)大蔓延,可以選擇性的在培養(yǎng)基中加入價(jià)的其它種抗生素,并在隔離實(shí)驗(yàn)室操作和獨(dú)立使用一切用具與培養(yǎng)基等)。
了解每株ATCC細(xì)胞株可能產(chǎn)生的生物危害是很難的,但是強(qiáng)烈推薦,所有的人類和其他靈長類生物的細(xì)胞在能否預(yù)防HIV和肝炎病毒的實(shí)驗(yàn)條件下操作,所有的操作必須在垂直層流超凈臺(tái)內(nèi)操作(推薦生物安全柜),操作過程中產(chǎn)生的廢液和廢儀器都要經(jīng)過清洗、酸處理等處理后才能丟棄。